Manual de prácticas de laboratorio de Bioquímica

$402.00

Autor: Sergio Sánchez Enríquez
Editorial: McGraw-Hill Interamericana
Edición: 3°
ISBN: 9781456220129
Formato: Libro digital
Año de publicación: 1970

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La metodología utilizada y fundamentada en este
Manual de prácticas permite de manera sencilla, pero al
mismo tiempo científi ca y validable, que el alumno navegue
por experimentos y reacciones que sin duda alguna
lo llevarán a preguntarse de qué manera podrá aplicar estos conocimientos, obtenidos en un salón de laboratorio,
más tarde en su carrera profesional. De tal manera,
estudiantes de las carreras de medicina, odontología, nutrición,
enfermería, cultura física y del deporte, y técnicos
superiores en radiología e imagen, encontrarán en este
Manual de prácticas un recurso didáctico y aplicativo importante
para el desarrollo de un ejercicio intelectual que
encontrará su nicho de aplicabilidad no sólo durante su
estancia en nuestro Centro Universitario de Ciencias de
la Salud, sino tal vez más allá de su entorno.
Los autores de este manual de prácticas, pertenecientes
a la Academia de Bioquímica, han hecho un esfuerzo
honesto y auténtico para que nuestros alumnos de
Bioquímica “aprendan a no temerle” más al proceso de
aprendizaje de la Bioquímica. Que aprendan a entender
que los procesos metabólicos, y que las reacciones interiorizadas
en cada célula de nuestro cuerpo, son más luminosas
y fáciles de entender de lo que aparentan.

Tabla de contenidos:

Front Matter
   Colaboradores
   Acerca de los autores
   Prólogo
   Presentación del manual
   Guía del estudiante
   Diagrama de flujo para la elaboración del caso integrador
   Normas de seguridad en el laboratorio
   Acciones a tomar en caso de accidente
   Recomendaciones para tener éxito en las prácticas
Práctica 1: Normas de bioseguridad y manejo de muestras biológicas, material, equipo y procedimientos
   Normas de bioseguridad general
   Medidas generales de protección
   Lavado de manos
   Método del lavado de manos
   Medidas de seguridad para el manejo de muestras biológicas
   Introducción
   Equipo de protección
   Limpieza del área y el material de trabajo
   Obtención y manejo de muestras biológicas
   Introducción
   Aspectos éticos
   Toma de sangre
   Composición de la sangre
   Suero y plasma
   Obtención de sangre
   Figura 1-1.
   Anticoagulantes
   Toma de muestra de orina
   Varones
   Mujeres
   Niños
   Medidas a seguir en caso de exposición a líquidos biológicos
   Material, equipo y procedimientos
   Introducción
   Figura 1-2.
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Centrifugación
   Fundamento
   Centrífuga
   Figura 1-3.
   Espectrofotometría
   Espectrofotómetro
   Cuadro 1-1. Características del espectro UV y la luz visible.
   Figura 1-4.
   Bioimpedanciometría
   Fundamento
   Figura 1-5.
   Actividades de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Bibliografía
Práctica 2: Agua y soluciones
   Introducción
   Agua
   Soluciones homogéneas
   Figura 2-1.
   Cuadro 2-1. Procedimiento para calcular el peso molecular.
   Propiedades de las soluciones
   Propiedades constitutivas.
   Propiedades aditivas.
   Propiedades coligativas.
   Diluciones
   Objetivo general
   Materiales y equipo
   Soluciones y reactivos
   Desarrollo experimental
   Experimento 1
   Manejo de concentraciones por espectrofotometría
   Fundamento
   Figura 2-2.
   Procedimiento
   Cuadro 2-2. Diluciones de fenolftaleína y su concentración.
   Cuadro 2-3. DO esperada para una concentración determinada de fenolftaleína.
   Actividades de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Preparación de reactivos
   Bibliografía
Práctica 3: pH y amortiguadores
   Introducción
   Agua
   Figura 3-1.
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Desarrollo experimental
   Experimento 1
   Medición del pH con tiras reactivas
   Fundamento
   Procedimiento
   Cuadro 3-1. Resultados de la medición de pH de distintas soluciones.
   Experimento 2
   Sistemas amortiguadores
   Fundamento
   Desarrollo
   Cuadro 3-2. Resultados obtenidos para el pH de diferentes soluciones, antes y después de la exposición a un ácido y a una base.
   Experimento 3
   Capacidad antiácida del hidróxido de aluminio y magnesio y del subsalicilato de bismuto
   Fundamento
   Procedimiento
   Cuadro 3-3. Resultados obtenidos para el pH de hidróxido de aluminio y magnesio (Melox), subsalicilato de bismuto (Peptobismol) y agua, antes y después de exponerlos a una base y a un ácido.
   Experimento 4
   Curva de titulación del ácido fosfórico (H3PO4)
   Fundamento
   Potenciómetro
   Figura 3-2.
   Procedimiento
   Actividades de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Preparación de reactivos
   Reactivo de Yamada:
   Bibliografía
Práctica 4: Aminoácidos y proteínas
   Introducción
   Métodos de separación de aminoácidos y proteínas
   Objetivo general
   Objetivo específico
   Material
   Desarrollo experimental
   Experimento 1
   Prueba de la ninhidrina
   Fundamento
   Figura 4-1.
   Reacción:
   Procedimiento
   Cuadro 4-1. Organización de los tubos de reacción y su contenido.
   Resultados esperados
   Resultados obtenidos
   Experimento 2
   Prueba de Biuret
   Fundamento
   Figura 4-2.
   Reacción
   Material
   Procedimiento
   Cuadro 4-2. Organización de los tubos de reacción y su contenido.
   Resultados esperados
   Resultados obtenidos
   Experimento 3
   Determinación de las proteínas totales del suero y la relación entre albúmina y globulina (A:G)
   Fundamento
   Materiales
   Procedimientos
   Determinación de proteínas totales
   Cuadro 4-3. Organización de los tubos de reacción y su contenido.
   Cuadro 4-4. Resultados obtenidos para absorbancia y concentración de proteínas totales.
   Cálculos
   Determinación de albúmina
   Cuadro 4-5. Organización de los tubos de reacción y su contenido.
   Cuadro 4-6. Resultados de absorbancia y concentración de albúmina.
   Cálculos
   Valores normales de referencia
   Experimento 4
   Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina
   Fundamento
   Procedimiento
   Discusión
   Conclusiones
   Actividades de aprendizaje
   Preparación de reactivos
   Bibliografía
Práctica 5: Regulación no específica de la actividad enzimática
   Introducción
   Catalasa
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Soluciones y reactivos
   Desarrollo experimental
   Preparación de la solución de catalasa
   Fundamento
   Reacciones
   Desarrollo
   Experimento 1
   Efecto de la concentración de la enzima
   Cuadro 5-1. Organización y contenido de cada uno de los matraces para el experimento 1.
   Experimento 2
   Efecto de la concentración de sustrato
   Cuadro 5-2. Organización y contenido de cada uno de los matraces para el experimento 2.
   Experimento 3
   Efecto del tiempo sobre la reacción
   Cuadro 5-3. Organización y contenido de cada uno de los matraces para el experimento 3.
   Experimento 4
   Efecto de la temperatura sobre la velocidad de la reacción
   Cuadro 5-4. Organización y contenido de cada uno de los matraces para el experimento 4.
   Experimento 5
   Efecto del pH sobre la velocidad de la reacción
   Cuadro 5-5. Organización y contenido de cada uno de los matraces para el experimento 5.
   Discusión
   Conclusiones
   Actividades de aprendizaje
   Preparación de reactivos
   Bibliografía
Práctica 6: Metabolismo de carbohidratos
   Introducción
   Definición de carbohidrato
   Clasificación de los carbohidratos
   Funciones de los carbohidratos
   Carbohidratos de la dieta
   Regulación de la glucemia e importancia biológica
   Categorías de la glucemia en ayuno
   Hemoglobina glucosilada
   Resistencia a la insulina
   Evaluación antropométrica
   Cuadro 6-1. Medidas antropométricas y su aplicación en la práctica clínica.
   Evaluación de la presión arterial
   Cuadro 6-2. Categorías de la presión arterial normal y de la hipertensión.
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Soluciones y reactivos
   Desarrollo experimental
   Procedimiento general (figura 6-1)
   Figura 6-1.
   A) Mediciones antropométricas
   Figura 6-2.
   B) Medición de la presión arterial
   Técnica práctica para la toma de presión arterial
   Figura 6-3.
   Figura 6-4.
   C) Extracción y procesamiento de muestras biológicas
   D) Determinación de la glucemia en ayuno y posprandial
   Fundamento
   Procedimiento
   Cuadro 6-3. Organización y contenido de los tubos para medición de glucosa.
   Cuadro 6-4. Resultados de glucemia en ayuno y posprandial.
   E) Determinación de la glucosa sanguínea capilar utilizando tiras reactivas
   Fundamento
   Procedimiento
   Discusión
   Conclusiones
   Actividades de aprendizaje
   Cuadro 6-5. Evaluación de factores de riesgo para diabetes en el entorno familiar del estudiante.
   Cuadro 6-6. Calificación de riesgo para el desarrollo de diabetes mellitus tipo 2.
   Cuadro 6-7. Indicadores de control metabólico.
   Actividad complementaria
   Preparación de reactivos
   Cuadro 6-8. Composición de reactivos.
   Bibliografía
Práctica 7: Metabolismo de lípidos
   Introducción
   Definición
   Funciones
   Importancia de la interacción de los lípidos con el agua
   Metabolismo de los lípidos
   Consecuencias del exceso de grasa corporal
   Cuadro 7-1. Definición del síndrome metabólico, de acuerdo con los criterios del ATP III.*
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Desarrollo experimental
   Procedimiento general
   Experimento 1
   MEDIDAS ANTROPOMÉTRICAS
   A) Clasificación del peso corporal de acuerdo con el IMC.
   Cuadro 7-2. Clasificación del peso de acuerdo al IMC.*
   B) Clasificación del riesgo cardiovascular, de acuerdo con el ICC.
   Cuadro 7-3. Clasificación del riesgo cardiovascular de acuerdo con el ICC.
   C) Medición del porcentaje de grasa corporal mediante bioimpedancia eléctrica.
   Procedimiento
   D) Clasificación del porcentaje de grasa de acuerdo con el género.
   Cuadro 7-4. Porcentaje de grasa corporal normal de acuerdo con el género.
   Actividades de aprendizaje
   Experimento 2
   INDICADORES BIOQUÍMICOS
   A) Determinación cuantitativa del colesterol sérico.
   Significado clínico
   Metodología
   Fundamento
   Procedimiento
   Cuadro 7-5. Organización de los tubos y su contenido para determinación de colesterol.
   Cuadro 7-6. Resultados de absorbancia y concentración de colesterol para cada muestra.
   Actividades de aprendizaje
   B) Determinación de la concentración sérica de triacilgliceroles (TG).
   Significado clínico
   Metodología
   Fundamento
   Procedimiento
   Cuadro 7-7. Organización de los tubos y su contenido para determinación de TG.
   Cuadro 7-8. Resultados de absorbancia para cada muestra.
   Actividades de aprendizaje
   C) Determinación cuantitativa del HDL-c sérico.
   Significado clínico
   Metodología
   Fundamento
   Reactivos
   Procedimiento
   Precipitación
   Cuadro 7-9. Organización de los tubos y su contenido para determinación de HDL-c.
   Cuadro 7-10. Resultados de absorbancia para cada muestra y concentración de HDL.
   Valores de referencia
   Actividades de aprendizaje
   D) Cálculo del índice TG/HDL.
   Valores de referencia
   Actividades de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Bibliografía
Práctica 8: Metabolismo de compuestos nitrogenados
   Introducción
   Balance nitrogenado
   Urea
   Ácido úrico
   Bilirrubina
   Creatinina
   Figura 8-1.
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Desarrollo experimental
   Experimento 1
   Determinación de urea por color
   Fundamento
   Muestra
   Procedimiento
   Cuadro 8-1. Organización y contenido de los tubos para determinar concentración de urea.
   Valores de referencia
   Experimento 2
   Determinación de ácido úrico uricasa/peroxidasa
   Fundamento
   Muestra
   Procedimiento
   Cuadro 8-2. Organización y contenido de los tubos para determinar concentración de ácido úrico.
   Valores de referencia
   Experimento 3
   Identificación de metabolitos en orina con tira reactiva
   Fundamento
   Muestra
   Procedimiento
   Actividades de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Bibliografía
Práctica 9: Extracción de DNA de células vegetales
   Introducción
   Objetivo general
   Objetivos específicos
   Materiales y equipo
   Soluciones y reactivos
   Desarrollo experimental
   Experimento 1
   Extracción del DNA
   Fundamento
   Obtención de DNA de germen de trigo
   Actividad de aprendizaje
   Experimento 2
   Identificación de la desoxirribosa
   Fundamento
   Procedimiento
   Actividad de aprendizaje
   Discusión
   Conclusiones
   Preparación de reactivos
   Bibliografía
Back Matter
   Apéndice 1: Definición de prefijos, unidades y constantes físicas
   Prefijos de uso frecuente
   Constantes físicas
   Apéndice 2: Constantes biológicas
   Bibliografía
   Apéndice 3: Determinación del gasto energético diario (GED)
   Metabolismo basal (MB)
   Acción dinámica específica de los alimentos (ADE)
   Termogénesis por la actividad física (AF)
   Fórmula de Harris Benedict para determinar el gasto energético diario
   Cuadro A3-1. Calorías aportadas por cada gramo de proteínas, lípidos y carbohidratos.
   Cuadro A3-2. Grupos de alimentos, equivalentes y composición promedio de nutrimentos.
   Cuadro A3-3. Grupos de alimentos y raciones recomendadas.
   Bibliografía
   Apéndice 4: Historia clínica

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